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活性蛋白试剂盒怎样提取

2025/5/24 21:06:22发布17次查看
活性蛋白提取试剂盒该怎么提取呢?首先我们一起来看看使用说明和操作。
一、试剂盒说明
本试剂盒用于从哺乳动物组织和培养细胞中提取具有活性的全蛋白, 用含有蛋白酶抑制剂及磷酸酶抑制剂的裂解缓冲液
lysis buffer 匀浆裂解组织或细胞,作用温和,提取过程简便。获得的全蛋白可用于 western blot、免疫共沉淀和酶 的活性的测定的等后续研究,但不能用于蛋白激酶及磷酸酶免疫共沉淀的研究,因本试剂盒中包括这两种酶的抑制剂。 应用方面:可用于 western blot、免疫共沉淀和酶活性测定等后续研究。
二、操作步骤
ⅰ、实体组织蛋白的提取;
1、在每 ml 冷 lysis buffer 加入 10 μl 磷酸酶抑制剂,1 μl 蛋白酶抑制剂和 10μl pmsf,混匀。冰上保存数分钟待 用;
2、每 100mg 固体组织置于培养皿中,手术剪剪碎成 3mm×3mm 左右的小块,加入 0.5~1 ml 冷 lysis buffer,玻 璃匀浆器上下手动匀浆 15 次,注意低温操作;
3、取组织匀浆液转移到 1.5ml 预冷的离心管,离心 10000 转/分,4℃离心 5 min;
4、取上清转移至新的预冷的离心管中,即为全蛋白提取物,蛋白定量(bradford 法、bca 法);
5、分装保存于-70℃,避免反复冻融。
ⅱ、培养细胞蛋白提取
1、 贴壁培养的细胞,吸去培养基后,加入 10ml/150mm 培养板的冷 pbs 洗两次,每次振摇数次以尽量去除培养液;
2、 悬浮培养的细胞或用细胞刮子刮下的贴壁细胞,将细胞及培养液移至离心管中,1000 转/分离心 10 min,再用10ml/150mm 培养板的冷 pbs,1000 转/分离心 5 min 洗两次;
3、在每 ml 冷 lysis buffer 加入 10μl 磷酸酶抑制剂,1μl 蛋白酶抑制剂和 10μl pmsf(用户自配:浓度 100mm, 溶于异丙醇),混匀。冰上保存数分钟待用;
4、 在上述培养板或离心管的细胞中,加入上述配制好的冷 lysis buffer;
5、冷室或冰上操作,贴壁细胞用细胞刮子刮下,皆 lysis buffer 一同转移至新的预冷的离心管中;悬浮培养或裂解前刮下的贴壁细胞皆 lysis buffer 一同转移至新的预冷的离心管中;
6、置于 4℃摇床平台上,温和振荡 15 min;
7、14,000rpm,4℃离心 15min,取上清为全蛋白提取物, 蛋白定量(bradford 法、bca 法);
8、 分装保存于-70℃,避免反复冻融。
三、注意事项
所有接触样品的用具及试剂均需预冷。我们在提取蛋白后,如有必要,可透析除去表面活性剂。
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