1.新购置的玻璃器皿应先在酸溶液内浸泡数小时。
2.使用过的器皿在清洗时要注意不能有洗涤剂和自来水的残留。
3.如果容器不洁净或有残留，可能导致培养基出现异常沉淀、微生物生长异常，也可能影响荧光现象的观察。
样本处理方法
1、不抗凝收集血清:将收集好的全血,静置1～2小时，直接低速离心分离出血清待用或保存。
2、抗凝收集血浆: 收集抗凝全血，轻轻颠倒充分抗凝后，可直接低速离心分离血浆(也可静置半小时左右再低速离心分离血浆)待用或保存。根据不同抗凝剂的性能特征，选择合适的抗凝剂。实验室常用的抗凝剂有肝素的各种盐、edta及枸橼酸钠。
①、每一份样本所加的抗凝剂的量要一致，同时所取的全血的量也要尽量一致;
②、收集抗凝全血后一定要轻轻颠倒，充分抗凝，防止部分血液未接触到抗凝剂而导致凝固;
③、抗凝全血收集的血浆相对较多（1ml抗凝全血能分离出0.4～0.5ml血浆）;
④、抗凝收集的血浆冷冻保存后，解冻时可能会出现絮状浑浊，如有则需要离心去掉浑浊后用于测定。
3、全血收集: 收集抗凝全血，轻轻颠倒充分抗凝后，可直接定量吸取全血，用冷双蒸水制备溶血液后用于不同指标的检测；也可定量吸取全血，转入ep管，低温冻存（温度越低越好），测定之前解冻并按比例加入冷双蒸水制成溶血液用于检测。
4、红细胞收集：收集抗凝全血，轻轻颠倒充分抗凝后，直接离心弃掉血浆，留下层红细胞，加入3倍体积的生理盐水，轻轻颠倒混匀，500～1000转/分,离心10分钟，弃上清留沉淀红细胞,重复2～3次,至上清液无色为止（洗涤红细胞）。
①、直接定量吸取红细胞，按比例加入冷双蒸水制成溶血液待测；
②、定量吸取红细胞，转入ep管，立即低温冻存（温度越低越好），测定之前解冻，并按比例加入冷双蒸水制成溶血液用于检测(解冻后部分红细胞会破裂,因此样本冷冻保存之前必须进行定量)。
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