百合的繁殖一般采用小鳞茎、鳞片、珠芽等器官进行无性繁殖。其缺点是繁殖系数低，长期无性繁殖还会导致病毒积累引起品种退化。 在百合研究生产中，已利用组织培养技术进行快速繁殖，以解决引种过程中，由于无性繁殖系数低造成的难于快速扩大推广的困难。我国上海百合试管苗早已出口荷兰。在新品种培育、茎尖脱毒苗培养上，组织培养也是有效方法。 1．外植体 百合的鳞茎盘，鳞片、珠芽、叶片、茎段、花器官各部和根等等，用作外植体，都有能分化成苗。各种外植体培养时，都可切割成5-8毫米左右的小块或切段。 2．材料消毒 洗净的材料，先用70%的酒清浸摇30-60秒，然后用饱和漂白粉上清液或0.1%升汞溶液消毒10-20分钟（视材料健幼而异），无菌水漂洗4-8次，即可按无菌操作切块（段）接种。花器官等培养时，常取未开放的花蕾，消毒后切开，取其内材料接种。 3．培养条件 温度20-25℃，光照800-1200lux，每天9-14小时照明，培养基ph值为5.6-5.8。 4．培养基和培养结果 一般用琼脂固体培养基，常用配方是ms+蔗糖或白糖30克/升，按需加入各种植物激素。 （1）无菌种子播种 用1/2ms，不加任何激素。种子可萌发为无菌实生苗。 （2）鳞片、叶片培养 用ms+ba 0.1~1.0+naa0.1~1.0毫克/升。对于不同种或品种的百合，激素含量与种类不同，以后鳞片或叶片都可产生小鳞茎状突起而分化成苗。在高naa低ba的培养基上，可1次形成完整植株，但幼苗根部有肿胀现象。相反，高ba低naa时，能形成大量小鳞茎状突起，从中分化出芽而无根。这样的苗子可转入生根培养基上（ms+iaa1+ba0.2，或ms+naa0.8~1.0毫克/升+ba0.2毫克/升，培养基ph值为5.8。或用naa、iba代替iaa），使其壮苗生根。杜永芳等采用abt生根粉替代naa和iba，对百合组培苗有良好的发根效果，最适浓度为0.3毫克/升。将生根的植株直接移入营养钵中易于成活。 （3）茎段、花柱和珠芽的培养 用ms+iaa1+ba0.2毫克/升，可以直接分化出芽。在花器官中以花丝为材料，优于花柱和子房。麝香百合花器培养的植株，生长约6个月以后，即可开花。 （4）根的培养 以毛百合根为材料，在ms+naa0.5~1.0毫克/升的培养基上，形成肿胀的粗根，将其切成小段，转到ms+ba2+naa0.2的培养基上培养，便能分化出苗。而轮叶百合在上述培养基上不形成肿胀的根段。毛百合试管苗经5-6个月后，能形成直径17毫米左右的鳞茎，移栽后成活情况良好。一些品种如rainbow hybrid和pink perfection的试管苗移栽后一年半，即开出大而美丽的花朵。 （5）胚培养 培养时仍以ms培养基较好，蔗糖浓度视种类而异，常在20-40克/升间。ph什以5.0较为适宜，naa用量只宜在0.01-0.001克/升间，加入适量ba有利幼胚成活。高ba会抑制胚根的产生，并促进胚组织愈伤组织化。通常先用ms+ba1+naa0.1培养促进愈伤组织生长，然后将长大的愈伤组织转移到1/2ms不加任何激素的培养基上，约2个月后，可形成大量的不定芽，延长培养时间，就会生根，产生出完整的杂交后代。 （6）百合无病毒培养 百合主要受花叶病毒等侵染，引起品种退化，鳞茎变小。培育无病毒苗仍是当前防治病毒的有效方法。因为病毒在植物体上的分布是不均匀的。幼嫩的茎尖分生组织中病毒含量微少。甚至不含病毒植株。 取材：在消毒的百合嫩梢上取0.2-0.3毫米的茎尖分生组织，或先进行鳞片培养（通过砂培或试管培养），待形成小球茎后，在其上剥离分生组织进行培养。 培养：接种好的百合茎尖分生组织，通常置于25-28℃的温度，光照强度初期1000-1500勒克斯、后期3000勒克斯，16/8小时的光暗周期的条件下培养。采用过的培养苗有： white、barker、kassanis、改良ms以及nielsen等。