主要实验步骤如下:
1.蛋白质抽提
实验对象为组织样品,取适量(250~500mg)新鲜组织样品或正确保存的组织样品,加1ml含蛋白酶抑制剂的总蛋白抽提试剂(或核蛋白抽提试剂),匀浆后抽提总蛋白(或核蛋白)。
实验对象为细胞样品,每份样品取1×106~1×107细胞,pbs清洗细胞,去pbs加0.1ml~1ml含蛋白酶抑制剂的总蛋白抽提试剂(或核蛋白抽提试剂)抽提总蛋白(或核蛋白)。
2. 蛋白质定量:按bca蛋白质定量试剂盒操作说明操作,测定样品浓度。
3. 变性聚丙烯酰胺不连续凝胶电泳(sds-page):将准备好的样品液和预染蛋白marker分别上样,标准加进*个孔中,电泳分离蛋白。
4. 蛋白质转移到pvdf膜,按bio-rad蛋白转移装置说明组装滤纸凝胶纤维素夹层,30ma恒流条件下,4°c转移过夜。
5. western blot膜的封闭和抗体孵育
膜在5%脱脂奶粉溶液中室温孵育1小时以封闭膜上的非特异结合。
封闭过的膜加入一抗室温孵育1.5小时,抗原抗体结合。
加入hrp标记的二抗体以结合一抗,室温孵育膜1小时。加入hrp标记的gapdh抗 体可同时检测gapdh含量。
6. western blot结果检测:化学发光法检测,膜与化学发光底物孵育,经x胶片曝光显 影。图片扫描保存为电脑文件,并用gis1000分析软件将图片上每个特异条带灰度值的数字化。
7. western blot数据分析:目的蛋白的灰度值除以内参gapdh/actin的灰度值以校正误差,所得结果代表某样品的目的蛋白相对含量。
8. 提供实验报告,包括详细的实验方法及免疫印迹实验结果的相关数据。