一般情况下,静息状态的t、b细胞不产生或极低产生细胞因子,多数细胞因子必须在t细胞激活后才能分泌产生,所以必须采用体外激活来刺激细胞因子的表达。流式胞内染色中*常用的活化方法就是使用一定浓度的广泛性刺激剂:pma (佛波酯) 和lonomycin (离子霉素),刺激细胞4-6 h (可优化)。
pma和lonomycin刺激细胞活化的机制:在细胞内,protein kinase c(pkc) 的激活,可以引起下游众多蛋白激酶的磷酸化,形成级联反应,导致多种蛋白的表达引起细胞的活化。pkc可以在dag (二酯酰甘油) 和calcium (ca2+) 的共同作用下被激活,pma是一种dag的模拟物,lonomycin 是ca2+的转运剂,可将细胞器内的ca2+ 转运到胞浆,所以pma和lonomycin的共同作用可以激活pkc,从而引起一系列的下游反应。
刺激后的细胞不能直接进行流式检测,细胞因子会分泌到胞外影响实验结果,还需要加入阻断剂,将细胞因子阻断在胞内,有助于细胞因子的聚集使胞内染色信号增强,提高检出率,所以这一步至关重要。常用的阻断剂有两种:1. monensin (莫能霉素);2. brefeldin a (bfa,布雷非德菌素a)。
monensin是一种离子载体(ionophore),可选择性结合单价阳离子如:li+、na+、k+、rb+、ag+和tl+,并把这些阳离子转运到细胞膜内,破坏跨膜离子梯度;bfa是一种真菌代谢物,可以干扰囊泡自粗面内质网至高尔基体的转运。这两种阻断剂的区别:monensin的阻断作用在高尔基体转运到胞外,bfa的阻断作用在内质网转运到高尔基体。
