确认rna的质量有以下两种常见方法
1）检测rna溶液的吸光度
280、320、230、260nm下的吸光度分别代表了核酸、背景（溶液浑浊度）、盐浓度和蛋白等有机物的值。一般的，我们只看od260/od280（ratio，r）。
1.82.0时，我们认为rna中蛋白或者时其他有机物的污染是可以容忍的，不过要注意，当你用tris作为缓冲液检测吸光度时，r值可能会大于2（一般应该是<2.2的）。当r<1.8时，溶液中蛋白或者时其他有机物的污染比较明显，你可以根据自己的需要决定这份rna的命运。当r>2.2时，说明rna已经水解成单核酸了。
2）rna的电泳图谱
一般来说，rna的电泳都是用变性胶进行的，但是根据经验，如果你仅仅是为了检测rna的质量是没有必要进行如此麻烦的实验的，用普通的琼脂糖胶就可以了。
电泳的目的是在于检测28s和18s条带的完整性和他们的比值，或者是mrna smear的完整性。一般来说，如果28s和18s条带明亮、清晰、条带锐利（指条带的边缘清晰），并且28s的亮度在18s条带的两倍以上，我们认为rna的质量是好的。
以上是我们常用的两种方法，但是这两种方法都无法明确的告诉我们rna溶液中有没有残留的rna酶。如果溶液中有非常微量的rna酶，用以上方法我们很难察觉，但是大部分后续的酶学反应都是在37度以上并且是长时间进行的。这样，如果rna溶液中有非常微量的rna酶，那么在后续的实验中就会受到残留的rna酶的干扰，从而导致实验失败
下面，我们介绍一个可以确认rna溶液中有没有残留的rna酶的方法。
3）保温试验
按照样品浓度，从rna溶液中吸取两份1000 ng的rna加入至0.5 ml的离心管中,并且用ph7.0的tris缓冲液补充到10 ul的总体积，然后密闭管盖。把其中一份放入70℃的恒温水浴中,保温1 h。另一份放置在-20℃冰箱中保存1 h。
1h后取出两份样本进行电泳。电泳完成后，比较两者的电泳条带。如果两者的条带一致或者无明显差别（当然，它们的条带也要符合方法2中的条件），则说明rna溶液中没有残留的rna酶污染，rna的质量很好。相反，如果70℃保温的样本有明显的降解，则说明rna溶液中有rna酶污染。
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